分子細胞生物学 · 6
原核生物と真核生物におけるDNA複製の比較
Comparison of DNA-replication in pro- and eukaryotes
🧠 原核生物と真核生物のDNADNA(deoxyribonucleic acid)複製は「半保存的・リーディング鎖leading strand リーディング鎖(leading strand)leading strand(リーディング鎖) 5′→3′・ラギング鎖lagging strand ラギング鎖(lagging strand)lagging strand(ラギング鎖) の岡崎フラグメント Okazaki fragment岡崎フラグメント(Okazaki fragment) Okazaki fragment(岡崎フラグメント)」という同じ設計図を共有するが、実装のスケールが全く異なる——環状DNA・単一複製起点 replication origin複製起点(replication origin) replication origin(複製起点)・大きな岡崎フラグメント Okazaki fragment 岡崎フラグメント(Okazaki fragment) Okazaki fragment(岡崎フラグメント) の原核生物に対し、真核生物は線状DNA・多数(ヒトでは実測25,000超)の複製起点 replication origin 複製起点(replication origin) replication origin(複製起点) (バブルbubbleバブル(bubble)bubble(バブル))・小さな岡崎フラグメント Okazaki fragment 岡崎フラグメント(Okazaki fragment) Okazaki fragment(岡崎フラグメント) という「同じ原理を桁違いに並列化した」システムになっている。この違いの根底には、真核生物だけがテロメア問題を抱える(線状染色体の宿命)という1点がある。
複製の場所
| 原核生物 | 真核生物 | |
|---|---|---|
| 場所 | 細胞質 | 核 |
複製機構の比較
共通点: 半保存的機構(05-principles-of-the-semiconservative-dna-replication-replication-fork-leading-and参照)、リーディング鎖leading strand リーディング鎖(leading strand)leading strand(リーディング鎖) (5′→3′)、ラギング鎖lagging strand ラギング鎖(lagging strand)lagging strand(ラギング鎖) (3′→5′方向に鋳型を読む)。
| 原核生物 | 真核生物 | |
|---|---|---|
| DNA形状 | 環状 | 線状、はるかに長い |
| 複製起点replication origin複製起点(replication origin)replication origin(複製起点) | 1個のみ(約100〜200 bp以上) | 多数の複製バブル bubble バブル(bubble) bubble(バブル) (各約150ヌクレオチド)。ヒトゲノムでは実測25,000か所超1 |
| 複製方向 | 起点から両方向 | 各起点から両方向。ただし全起点が一斉に開くのではなく、S期を通じて順次発火する2 |
| 岡崎フラグメントOkazaki fragment 岡崎フラグメント(Okazaki fragment)Okazaki fragment(岡崎フラグメント) 長 | 長い(1000〜2000ヌクレオチド) | 短い(100〜200ヌクレオチド) |
⚠️ 「起点が同時に発火する」は簡略化した言い方。 真核生物の起点は数が桁違いに多いのは確かで、ヒトゲノムでは次世代シーケンサによる直接マッピング(ini-seq)で25,000か所超が同定されている1。しかし全部が一斉に開くわけではない。HeLa細胞のDNAコーミングでは起点は約40 kb間隔に並び、小さなクラスタ単位で順次発火して、その同期性がS期の進行につれて高まる2。「早期複製ドメイン・後期複製ドメイン」という複製タイミングのプログラムがあるということで、並列化されているが同時ではないと覚える。
酵素(ポリメラーゼ)の比較
共通の酵素分類:
- エンドヌクレアーゼendonucleaseエンドヌクレアーゼ(endonuclease)endonuclease(エンドヌクレアーゼ):ポリヌクレオチド polynucleotide ポリヌクレオチド(polynucleotide) polynucleotide(ポリヌクレオチド) 鎖の中央でホスホジエステル結合 phosphodiester bond ホスホジエステル結合(phosphodiester bond) phosphodiester bond(ホスホジエステル結合) を切断
- エキソヌクレアーゼexonucleaseエキソヌクレアーゼ(exonuclease)exonuclease(エキソヌクレアーゼ):ポリヌクレオチド polynucleotide ポリヌクレオチド(polynucleotide) polynucleotide(ポリヌクレオチド) 鎖の末端でホスホジエステル結合 phosphodiester bond ホスホジエステル結合(phosphodiester bond) phosphodiester bond(ホスホジエステル結合) を切断
原核生物のDNAポリメラーゼ
| 酵素 | 修復活性 | 合成活性 |
|---|---|---|
| DNAポリメラーゼI | 3′-5′・5′-3′両方向のエキソヌクレアーゼ活性 exonuclease activity エキソヌクレアーゼ活性(exonuclease activity) exonuclease activity(エキソヌクレアーゼ活性) を持ち除去修復 excision repair 除去修復(excision repair) excision repair(除去修復) に関与——岡崎フラグメント Okazaki fragment 岡崎フラグメント(Okazaki fragment) Okazaki fragment(岡崎フラグメント) のプライマーを単独で除去可能 | RNARNA(ribonucleic acid)プライマーへのヌクレオチド付加。Pol IIIホロ酵素 holoenzyme ホロ酵素(holoenzyme) holoenzyme(ホロ酵素) が組み立つと高い進行性で複製を引き継ぐため、Pol Iは主にラギング鎖 lagging strand ラギング鎖(lagging strand) lagging strand(ラギング鎖) でプライマー配列をDNAに置換する役割を担う |
| DNAポリメラーゼII | 3′-5′エキソヌクレアーゼ活性 exonuclease activity エキソヌクレアーゼ活性(exonuclease activity) exonuclease activity(エキソヌクレアーゼ活性) を持つ | DNA合成は非常に緩徐で、DNA修復にのみ関与 |
| DNAポリメラーゼIII | 3′-5′エキソヌクレアーゼ活性 exonuclease activity エキソヌクレアーゼ活性(exonuclease activity) exonuclease activity(エキソヌクレアーゼ活性) を持つ | 複製の主役(MAIN) |
💡 大腸菌のDNAポリメラーゼは実は5種類ある。 試験で問われるのはI・II・IIIだが、1999年以降にPol IV(DinB)とPol V(UmuD′₂C)が加わり、現在は大腸菌で5種類、出芽酵母budding yeasts 出芽酵母(budding yeasts)budding yeasts(出芽酵母) で8種類、ヒトでは少なくとも15種類が認められている3。IV・Vは校正 proofreading 校正(proofreading) proofreading(校正) 活性を持たない低忠実度の損傷乗り越え合成用で、SOS応答で誘導され変異の主な出どころになる。
真核生物のDNAポリメラーゼ
| 酵素 | 役割 |
|---|---|
| α(アルファalfa (alpha)アルファ(alfa (alpha))alfa (alpha)(アルファ)) | プライマーゼprimase プライマーゼ(primase)primase(プライマーゼ) の後の初期セグメント(15〜30ヌクレオチド)の合成 |
| β(ベータ) | DNA修復(主要な修復酵素) |
| γ(ガンマ) | ミトコンドリア内でのDNA合成 |
| δ(デルタ) | 主要な合成酵素。現在はラギング鎖lagging strandラギング鎖(lagging strand)lagging strand(ラギング鎖)側が本業と考えられている(δの複製の90%超がラギング鎖 lagging strand ラギング鎖(lagging strand) lagging strand(ラギング鎖) 鋳型)4 |
| ε(イプシロン) | リーディング鎖leading strandリーディング鎖(leading strand)leading strand(リーディング鎖)の主要な合成酵素5。DNA修復にも関与 |
⭐ 一部のポリメラーゼはエキソヌクレアーゼ活性 exonuclease activity エキソヌクレアーゼ活性(exonuclease activity) exonuclease activity(エキソヌクレアーゼ活性) を持たず、他のエキソヌクレアーゼ exonuclease エキソヌクレアーゼ(exonuclease) exonuclease(エキソヌクレアーゼ) と複合体を形成する(3′-5′校正 proofreading校正(proofreading) proofreading(校正)、proofreading;RNAプライマーの分解)。δ・εポリメラーゼはエキソヌクレアーゼ活性 exonuclease activity エキソヌクレアーゼ活性(exonuclease activity) exonuclease activity(エキソヌクレアーゼ活性) を持つ。
⚠️ δとεの鎖の分担は2007〜2008年に決着した。 古い教科書は「δがリーディング鎖 leading strandリーディング鎖(leading strand) leading strand(リーディング鎖)・ラギング鎖lagging strand ラギング鎖(lagging strand)lagging strand(ラギング鎖) の両方を作り、εは補助と修復にまわる」と書く。しかし酵母で、特定のミスマッチ mismatch (base-pair mismatch) ミスマッチ(mismatch (base-pair mismatch)) mismatch (base-pair mismatch)(ミスマッチ) だけ起こしやすい低忠実度変異型 mutant 変異型(mutant) mutant(変異型) ポリメラーゼを作り、置換変異が起きる向きが複製起点 replication origin 複製起点(replication origin) replication origin(複製起点) との位置関係でどう変わるかを追った実験により、εがリーディング鎖 leading strand リーディング鎖(leading strand) leading strand(リーディング鎖) を5、δがラギング鎖 lagging strand ラギング鎖(lagging strand) lagging strand(ラギング鎖) を(δの複製の90%超がラギング鎖 lagging strand ラギング鎖(lagging strand) lagging strand(ラギング鎖) 鋳型で行われる)4担うという分担が示された。δ・εともに3′-5′校正 proofreading 校正(proofreading) proofreading(校正) 活性を持つ点は変わらない。
その他のタンパク質・酵素
共通点: リガーゼligaseリガーゼ(ligase)ligase(リガーゼ)、トポイソメラーゼItopoisomerase IトポイソメラーゼI(topoisomerase I)topoisomerase I(トポイソメラーゼI)・II、プライマーゼprimaseプライマーゼ(primase)primase(プライマーゼ)。
| トポイソメラーゼtopoisomerase トポイソメラーゼ(topoisomerase)topoisomerase(トポイソメラーゼ) の型 | 機序 |
|---|---|
| I型(トポイソメラーゼtopoisomerase トポイソメラーゼ(topoisomerase)topoisomerase(トポイソメラーゼ) 1・3) | 1本鎖を切断、エネルギー源不要 |
| II型(トポイソメラーゼtopoisomerase トポイソメラーゼ(topoisomerase)topoisomerase(トポイソメラーゼ) 2・4) | 2本鎖を切断、ATP要求 |
| 原核生物 | 真核生物 | |
|---|---|---|
| リガーゼligase リガーゼ(ligase)ligase(リガーゼ) のエネルギー源 | NAD⁺ | ATP |
| テロメア・テロメラーゼtelomeraseテロメラーゼ(telomerase)telomerase(テロメラーゼ) | なし | あり(胚性幹細胞embryonic stem cell胚性幹細胞(embryonic stem cell)embryonic stem cell(胚性幹細胞)・癌細胞でのみ活性、07-telomeric-repeat-sequences-replication-of-the-telomeric-regions-of-eukaryotic参照) |
| 開始タンパク質 | 細菌特有の開始タンパク質群 | PCNA、RFC、RNase H、FEN1 |
原核生物の複製開始機構
- DNA複製はoriCという単一の規定DNA配列から始まる
- 複数の開始タンパク質分子がoriCの特異的DNA配列に結合し、DNAをタンパク質にきつく巻き付けたコンパクト構造を形成して二重らせん double helix 二重らせん(double helix) double helix(二重らせん) を不安定化させる
- DnaAタンパク質がDnaAボックスと呼ばれる起点領域に結合し、13 bpの開口を引き起こし、DNAが負に超らせん化される
- このDNA開口によりタンパク質複合体が複製バブル bubble バブル(bubble) bubble(バブル) へ入りssDNAに結合できるようになる——各複合体はDnaB(ヘリカーゼhelicaseヘリカーゼ(helicase)helicase(ヘリカーゼ))とDnaC(ヘリカーゼhelicase ヘリカーゼ(helicase)helicase(ヘリカーゼ) ローダー、helicase loader)からなる
- DnaAボックス上流のDnaBボックス(AT豊富で巻き戻しが起こりやすい、ATP要求)が巻き戻される
- ヘリカーゼhelicase ヘリカーゼ(helicase)helicase(ヘリカーゼ) ローディングタンパク質がヘリカーゼ helicase ヘリカーゼ(helicase) helicase(ヘリカーゼ) を運び込み、適切にロードされるまでヘリカーゼ helicase ヘリカーゼ(helicase) helicase(ヘリカーゼ) の活性を抑制する
- ロードされたヘリカーゼ helicase ヘリカーゼ(helicase) helicase(ヘリカーゼ) は環を開いてssDNAの周りに配置し、プライマーゼprimase プライマーゼ(primase)primase(プライマーゼ) が初期プライマーを合成できるようにする
- ローダーが解離する
- 2つの複製フォーク replication fork 複製フォーク(replication fork) replication fork(複製フォーク) が組み立てられ、互いに逆方向へ移動する
- SSB(一本鎖結合タンパク質)がssDNAの二次構造 secondary structure 二次構造(secondary structure) secondary structure(二次構造) 形成・再アニールを防ぐ
真核生物に特有のタンパク質
| タンパク質 | 機能 |
|---|---|
| PCNA(増殖細胞核抗原 nuclear antigen核抗原(nuclear antigen) nuclear antigen(核抗原)、proliferating cell nuclear antigen) | DNAポリメラーゼδ・εと複合環を形成し、ポリメラーゼが鋳型から解離するのを防ぐ |
| RFC(複製因子C、replication factor C) | PCNA環を開く機能。DNA 3′端へのPCNAの装着を触媒(ATP依存性) |
| RNase H | ポリメラーゼαまたはプライマーゼ primase プライマーゼ(primase) primase(プライマーゼ) が作ったRNAプライマーを除去 |
| FEN1 | プライマー最後のRNAヌクレオチドを除去、H結合が不正確な場合はDNAヌクレオチドも除去しうる |
速度と複製のタイミング
| 原核生物 | 真核生物 | |
|---|---|---|
| 速度 | 速い(約500塩基/秒。大腸菌の生体内 in vivo 生体内(in vivo) in vivo(生体内) 実測では550〜750 nt/秒、平均653 nt/秒)6 | 遅い(50塩基/秒。HeLa細胞の実測は平均0.7 kb/分=約12 nt/秒、最大2.0 kb/分)2 |
| 複製のタイミング | ほぼ連続的に発生 | 細胞周期のS期のみ |
flowchart TD
A["原核生物:環状<span class='jp-term jp-term-diagram' title='deoxyribonucleic acid'>DNA</span>、単一起点oriC"] --> B["両方向へ<span class='jp-term jp-term-diagram' title='replication fork'>複製フォーク</span>が進行(θ構造)"]
B --> C["大きな<span class='jp-term jp-term-diagram' title='Okazaki fragment'>岡崎フラグメント</span>(1000-2000 nt)"]
C --> D["速い(500塩基/秒)・ほぼ連続的"]
E["真核生物:線状<span class='jp-term jp-term-diagram' title='deoxyribonucleic acid'>DNA</span>、多数の<span class='jp-term jp-term-diagram' title='replication origin'>複製起点</span>(ヒトで25,000超)"] --> F["各起点から複製開始(複製<span class='jp-term jp-term-diagram' title='bubble'>バブル</span>)。S期を通じ順次発火"]
F --> G["小さな<span class='jp-term jp-term-diagram' title='Okazaki fragment'>岡崎フラグメント</span>(100-200 nt)"]
G --> H["遅い(50塩基/秒)・S期のみ"]
まとめ
- 原核生物・真核生物ともに半保存的複製 semiconservative replication半保存的複製(semiconservative replication) semiconservative replication(半保存的複製)・リーディング鎖leading strand リーディング鎖(leading strand)leading strand(リーディング鎖) の連続合成・ラギング鎖lagging strand ラギング鎖(lagging strand)lagging strand(ラギング鎖) の岡崎フラグメント Okazaki fragment 岡崎フラグメント(Okazaki fragment) Okazaki fragment(岡崎フラグメント) 形成という共通原理を持つが、原核生物は環状DNA・単一起点・大きな岡崎フラグメント Okazaki fragment岡崎フラグメント(Okazaki fragment) Okazaki fragment(岡崎フラグメント)、真核生物は線状DNA・多数の複製起点 replication origin 複製起点(replication origin) replication origin(複製起点) (ヒトで実測25,000超)・小さな岡崎フラグメント Okazaki fragment 岡崎フラグメント(Okazaki fragment) Okazaki fragment(岡崎フラグメント) という対照的な実装を取る。真核の起点は一斉ではなく、S期を通じて順次発火する。
- DNAポリメラーゼは原核生物でI(除去修復excision repair除去修復(excision repair)excision repair(除去修復)・プライマー置換)・II(修復)・III(複製の主役)、真核生物でα(初期合成)・β(修復)・γ(ミトコンドリア)・δ(ラギング鎖lagging strand ラギング鎖(lagging strand)lagging strand(ラギング鎖) の主要合成)・ε(リーディング鎖leading strand リーディング鎖(leading strand)leading strand(リーディング鎖) の主要合成)に分化している。大腸菌には損傷乗り越え用のPol IV・Vもあり計5種類、ヒトでは少なくとも15種類のDNAポリメラーゼが知られる。
- 真核生物特有のPCNA-RFC複合体はポリメラーゼの高い進行性を保証し、テロメア・テロメラーゼtelomerase テロメラーゼ(telomerase)telomerase(テロメラーゼ) は真核生物の線状染色体特有の問題に対応する。
- 複製速度は原核生物の方が1桁以上速く(大腸菌の生体内 in vivo 生体内(in vivo) in vivo(生体内) 実測 平均653 nt/秒 対 ヒトの実測 十数〜50塩基/秒)、複製のタイミングも原核生物はほぼ連続的である一方、真核生物は細胞周期のS期に限定される。
出典
- 1.Genome-wide identification and characterisation of human DNA replication origins by initiation site sequencing (ini-seq)(Nucleic Acids Research・2016)ini-seq法によりヒトゲノム上に25,000か所を超える複製起点をサブキロベース分解能で同定。多くは転写開始点にあり、早期複製ドメインに集まる閲覧 2026-08-22
- 2.Evidence for sequential and increasing activation of replication origins along replication timing gradients in the human genome(PLoS Computational Biology・2011)HeLa細胞のDNAコーミングで複製起点は約40 kb間隔に並び、小クラスタ単位で順次発火し同期性がS期を通じて高まる。複製フォーク速度は平均0.7 kb/分(最大2.0 kb/分)でS期を通じ一定閲覧 2026-08-22
- 3.Multiple functions of DNA polymerases(Critical Reviews in Plant Sciences・2007)現在認められているDNAポリメラーゼは大腸菌で5種類、出芽酵母で8種類、ヒトで少なくとも15種類閲覧 2026-08-22
- 4.Division of labor at the eukaryotic replication fork(Molecular Cell・2008)酵母pol3-L612M変異体の解析から、Pol δの複製の90%超がラギング鎖鋳型で行われる。Pol εがリーディング鎖、Pol δがラギング鎖という分担モデルを支持する閲覧 2026-08-22
- 5.Yeast DNA polymerase epsilon participates in leading-strand DNA replication(Science・2007)校正能を落としたPol ε変異体を用いた酵母実験で、置換変異の向きが複製起点との位置関係に依存し、Pol εがリーディング鎖合成を担うことが示された閲覧 2026-08-22
- 6.A single-molecule approach to DNA replication in Escherichia coli cells demonstrated that DNA polymerase III is a major determinant of fork speed(Molecular Microbiology・2013)大腸菌生体内のDNAコーミング実測で複製フォーク速度は550〜750 nt/秒、平均653 nt/秒。Pol IIIの鎖伸長速度(野生型900 nt/秒)がフォーク速度の主決定因子閲覧 2026-08-22