分子細胞生物学

分子細胞生物学 · 6

原核生物と真核生物におけるDNA複製の比較

Comparison of DNA-replication in pro- and eukaryotes

🧠 原核生物と真核生物の複製は「半保存的・5′→3′・の」という同じ設計図を共有するが、実装のスケールが全く異なる——環状・単一・大きなの原核生物に対し、真核生物は線状・多数(ヒトでは実測25,000超)の()・小さなという「同じ原理を桁違いに並列化した」システムになっている。この違いの根底には、真核生物だけがテロメア問題を抱える(線状染色体の宿命)という1点がある。

複製の場所

原核生物 真核生物
場所 細胞質 核

複製機構の比較

共通点: 半保存的機構(05-principles-of-the-semiconservative-dna-replication-replication-fork-leading-and参照)、(5′→3′)、(3′→5′方向に鋳型を読む)。

原核生物 真核生物
形状 環状 線状、はるかに長い
1個のみ(約100〜200 bp以上) 多数の複製(各約150ヌクレオチド)。ヒトゲノムでは実測25,000か所超1
複製方向 起点から両方向 各起点から両方向。ただし全起点が一斉に開くのではなく、S期を通じて順次発火する2
長 長い(1000〜2000ヌクレオチド) 短い(100〜200ヌクレオチド)

⚠️ 「起点が同時に発火する」は簡略化した言い方。 真核生物の起点は数が桁違いに多いのは確かで、ヒトゲノムでは次世代シーケンサによる直接マッピング(ini-seq)で25,000か所超が同定されている1。しかし全部が一斉に開くわけではない。HeLa細胞のコーミングでは起点は約40 kb間隔に並び、小さなクラスタ単位で順次発火して、その同期性がS期の進行につれて高まる2。「早期複製ドメイン・後期複製ドメイン」という複製タイミングのプログラムがあるということで、並列化されているが同時ではないと覚える。

酵素(ポリメラーゼ)の比較

共通の酵素分類:

  • :鎖の中央でを切断
  • :鎖の末端でを切断

原核生物のDNAポリメラーゼ

酵素 修復活性 合成活性
ポリメラーゼI 3′-5′・5′-3′両方向のを持ちに関与——のプライマーを単独で除去可能 プライマーへのヌクレオチド付加。Pol IIIが組み立つと高い進行性で複製を引き継ぐため、Pol Iは主にでプライマー配列をに置換する役割を担う
ポリメラーゼII 3′-5′を持つ 合成は非常に緩徐で、修復にのみ関与
ポリメラーゼIII 3′-5′を持つ 複製の主役(MAIN)

💡 大腸菌のポリメラーゼは実は5種類ある。 試験で問われるのはI・II・IIIだが、1999年以降にPol IV(DinB)とPol V(UmuD′₂C)が加わり、現在は大腸菌で5種類、で8種類、ヒトでは少なくとも15種類が認められている3。IV・Vは活性を持たない低忠実度の損傷乗り越え合成用で、SOS応答で誘導され変異の主な出どころになる。

真核生物のDNAポリメラーゼ

酵素 役割
α() の後の初期セグメント(15〜30ヌクレオチド)の合成
β(ベータ) 修復(主要な修復酵素)
γ(ガンマ) ミトコンドリア内での合成
δ(デルタ) 主要な合成酵素。現在は側が本業と考えられている(δの複製の90%超が鋳型)4
ε(イプシロン) の主要な合成酵素5。修復にも関与

⭐ 一部のポリメラーゼはを持たず、他のと複合体を形成する(3′-5′、proofreading;プライマーの分解)。δ・εポリメラーゼはを持つ。

⚠️ δとεの鎖の分担は2007〜2008年に決着した。 古い教科書は「δが・の両方を作り、εは補助と修復にまわる」と書く。しかし酵母で、特定のだけ起こしやすい低忠実度ポリメラーゼを作り、置換変異が起きる向きがとの位置関係でどう変わるかを追った実験により、εがを5、δがを(δの複製の90%超が鋳型で行われる)4担うという分担が示された。δ・εともに3′-5′活性を持つ点は変わらない。

その他のタンパク質・酵素

共通点: 、・II、。

の型 機序
I型(1・3) 1本鎖を切断、エネルギー源不要
II型(2・4) 2本鎖を切断、ATP要求
原核生物 真核生物
のエネルギー源 NAD⁺ ATP
テロメア・ なし あり(・癌細胞でのみ活性、07-telomeric-repeat-sequences-replication-of-the-telomeric-regions-of-eukaryotic参照)
開始タンパク質 細菌特有の開始タンパク質群 PCNA、RFC、RNase H、FEN1

原核生物の複製開始機構

  1. 複製はoriCという単一の規定配列から始まる
  2. 複数の開始タンパク質分子がoriCの特異的配列に結合し、をタンパク質にきつく巻き付けたコンパクト構造を形成してを不安定化させる
  3. DnaAタンパク質がDnaAボックスと呼ばれる起点領域に結合し、13 bpの開口を引き起こし、が負に超らせん化される
  4. この開口によりタンパク質複合体が複製へ入りssDNAに結合できるようになる——各複合体はDnaB()とDnaC(ローダー、helicase loader)からなる
  5. DnaAボックス上流のDnaBボックス(AT豊富で巻き戻しが起こりやすい、ATP要求)が巻き戻される
  6. ローディングタンパク質がを運び込み、適切にロードされるまでの活性を抑制する
  7. ロードされたは環を開いてssDNAの周りに配置し、が初期プライマーを合成できるようにする
  8. ローダーが解離する
  9. 2つのが組み立てられ、互いに逆方向へ移動する
  10. SSB(一本鎖結合タンパク質)がssDNAの形成・再アニールを防ぐ

真核生物に特有のタンパク質

タンパク質 機能
PCNA(増殖細胞、proliferating cell nuclear antigen) ポリメラーゼδ・εと複合環を形成し、ポリメラーゼが鋳型から解離するのを防ぐ
RFC(複製因子C、replication factor C) PCNA環を開く機能。 3′端へのPCNAの装着を触媒(ATP依存性)
RNase H ポリメラーゼαまたはが作ったプライマーを除去
FEN1 プライマー最後のヌクレオチドを除去、H結合が不正確な場合はヌクレオチドも除去しうる

速度と複製のタイミング

原核生物 真核生物
速度 速い(約500塩基/秒。大腸菌の実測では550〜750 nt/秒、平均653 nt/秒)6 遅い(50塩基/秒。HeLa細胞の実測は平均0.7 kb/分=約12 nt/秒、最大2.0 kb/分)2
複製のタイミング ほぼ連続的に発生 細胞周期のS期のみ
flowchart TD
  A["原核生物:環状<span class='jp-term jp-term-diagram' title='deoxyribonucleic acid'>DNA</span>、単一起点oriC"] --> B["両方向へ<span class='jp-term jp-term-diagram' title='replication fork'>複製フォーク</span>が進行(θ構造)"]
  B --> C["大きな<span class='jp-term jp-term-diagram' title='Okazaki fragment'>岡崎フラグメント</span>(1000-2000 nt)"]
  C --> D["速い(500塩基/秒)・ほぼ連続的"]

  E["真核生物:線状<span class='jp-term jp-term-diagram' title='deoxyribonucleic acid'>DNA</span>、多数の<span class='jp-term jp-term-diagram' title='replication origin'>複製起点</span>(ヒトで25,000超)"] --> F["各起点から複製開始(複製<span class='jp-term jp-term-diagram' title='bubble'>バブル</span>)。S期を通じ順次発火"]
  F --> G["小さな<span class='jp-term jp-term-diagram' title='Okazaki fragment'>岡崎フラグメント</span>(100-200 nt)"]
  G --> H["遅い(50塩基/秒)・S期のみ"]

まとめ

  • 原核生物・真核生物ともに・の連続合成・の形成という共通原理を持つが、原核生物は環状・単一起点・大きな、真核生物は線状・多数の(ヒトで実測25,000超)・小さなという対照的な実装を取る。真核の起点は一斉ではなく、S期を通じて順次発火する。
  • ポリメラーゼは原核生物でI(・プライマー置換)・II(修復)・III(複製の主役)、真核生物でα(初期合成)・β(修復)・γ(ミトコンドリア)・δ(の主要合成)・ε(の主要合成)に分化している。大腸菌には損傷乗り越え用のPol IV・Vもあり計5種類、ヒトでは少なくとも15種類のポリメラーゼが知られる。
  • 真核生物特有のPCNA-RFC複合体はポリメラーゼの高い進行性を保証し、テロメア・は真核生物の線状染色体特有の問題に対応する。
  • 複製速度は原核生物の方が1桁以上速く(大腸菌の実測 平均653 nt/秒 対 ヒトの実測 十数〜50塩基/秒)、複製のタイミングも原核生物はほぼ連続的である一方、真核生物は細胞周期のS期に限定される。

出典

  1. 1.Genome-wide identification and characterisation of human DNA replication origins by initiation site sequencing (ini-seq)(Nucleic Acids Research・2016)ini-seq法によりヒトゲノム上に25,000か所を超える複製起点をサブキロベース分解能で同定。多くは転写開始点にあり、早期複製ドメインに集まる閲覧 2026-08-22
  2. 2.Evidence for sequential and increasing activation of replication origins along replication timing gradients in the human genome(PLoS Computational Biology・2011)HeLa細胞のDNAコーミングで複製起点は約40 kb間隔に並び、小クラスタ単位で順次発火し同期性がS期を通じて高まる。複製フォーク速度は平均0.7 kb/分(最大2.0 kb/分)でS期を通じ一定閲覧 2026-08-22
  3. 3.Multiple functions of DNA polymerases(Critical Reviews in Plant Sciences・2007)現在認められているDNAポリメラーゼは大腸菌で5種類、出芽酵母で8種類、ヒトで少なくとも15種類閲覧 2026-08-22
  4. 4.Division of labor at the eukaryotic replication fork(Molecular Cell・2008)酵母pol3-L612M変異体の解析から、Pol δの複製の90%超がラギング鎖鋳型で行われる。Pol εがリーディング鎖、Pol δがラギング鎖という分担モデルを支持する閲覧 2026-08-22
  5. 5.Yeast DNA polymerase epsilon participates in leading-strand DNA replication(Science・2007)校正能を落としたPol ε変異体を用いた酵母実験で、置換変異の向きが複製起点との位置関係に依存し、Pol εがリーディング鎖合成を担うことが示された閲覧 2026-08-22
  6. 6.A single-molecule approach to DNA replication in Escherichia coli cells demonstrated that DNA polymerase III is a major determinant of fork speed(Molecular Microbiology・2013)大腸菌生体内のDNAコーミング実測で複製フォーク速度は550〜750 nt/秒、平均653 nt/秒。Pol IIIの鎖伸長速度(野生型900 nt/秒)がフォーク速度の主決定因子閲覧 2026-08-22