生化学

生化学 · 3/6

P/O比の実験的決定

Experimental determination of the P/O ratio — P I

前提:正常
酸化的リン酸化と電子伝達系ATP合成酵素の機構とP/O比

🧠 実習は「単離ミトコンドリアの酸素消費を追い、ATP合成量との対応からP/O比を求める」と読む。 酸素電極でADP添加後の呼吸加速を確認し、ADPパルス法、リン酸取り込み法、またはATP産生と酸素消費の同時測定でP/O比を算出する。1 阻害薬・で共役の仕組みを実証する。

原理:化学浸透説

によれば、呼吸基質の酸化・ADPのリン酸化・イオン輸送は、すべて(ΔpHと膜電位Δψₘ)を共通の中間体として共役している。ATP合成には数個のH⁺の再流入が必要で、ATP/ADP交換とリン酸取り込みまで含めた細胞質ATP供給の実効コストはさらに大きくなる。

呼吸調節とP/O比

無傷のミトコンドリアが呼吸基質を酸化しADPをリン酸化するとき、酸素消費速度とATP合成量の両方を測れる。

  • : 至適条件ではADP添加で呼吸が加速する。ただし呼吸速度はADPだけでなくPi、還元状態、酸素化などにも影響される。
  • = v(+ADP) ÷ v(−ADP)(State 3 ÷ State 4)。 呼吸とATP合成の共役の良さを表す。
  • P/O比(ADP/O、ATP/O)は、ADPパルス法、リン酸取り込み法、またはATP合成速度と酸素消費速度の同時測定から算出する。基質がに入る位置で値が異なる。
flowchart TD
  A["ミトコンドリア+基質、ADPなし<br>H⁺の漏れの分だけ<br>ゆっくり酸素を<span class='jp-term jp-term-diagram' title='State 2'>消費</span>"]
  A --> B["既知量のADPを添加<br><span class='jp-term jp-term-diagram' title='State 3'>呼吸加速</span>"]
  B --> C["ADPがすべてATPになる<br><span class='jp-term jp-term-diagram' title='State 4'>呼吸減速</span>"]
  C --> D["State 3 の<span class='jp-term jp-term-diagram' title='oxygen consumption'>酸素消費量</span>と<br>加えたADP量から ADP/O比"]
  C --> E["<span class='jp-term jp-term-diagram' title='respiratory control ratio (RCR)'>呼吸調節比</span><br>= State 3 ÷ State 4 の速度"]

計算のしかた(ADPパルス法): ADP/O比 = 加えたADP(nmol)÷ State 3 の間に消費した酸素原子(nmol O)。酸素電極は溶存O₂の濃度を測るので、O₂ 1分子=O原子2個として換算する(O₂の量で割ると値が2倍に出る誤りに注意)。

基質の入り口と阻害薬の作用点(反応図)

実習で使う2種類の基質は、への入り口が違う。これが阻害薬への反応の違いを生む。下の図の後半(NADH・からH₂Oまで)は、運び手から運び手へ電子が渡る流れを描いたもので、各矢印の運び手自身のはラベルに書いた。

flowchart TD
  subgraph NADSUB["グルタミン酸+<span class='jp-term jp-term-diagram' title='malate'>リンゴ酸</span>(NADH連結基質)"]
    MAL["<span class='jp-term jp-term-diagram' title='malate'>リンゴ酸</span>"] -->|"<span class='jp-term jp-term-diagram' title='malate dehydrogenase (MDH)'>リンゴ酸脱水素酵素</span><br>NAD⁺ → NADH"| OAA["<span class='jp-term jp-term-diagram' title='oxaloacetate'>オキサロ酢酸</span>"]
    OAA -->|"<span class='jp-term jp-term-diagram' title='aspartate aminotransferase (AST)'>アスパラギン酸アミノトランスフェラーゼ</span><br>グルタミン酸 → <span class='jp-term jp-term-diagram' title='alpha-ketoglutarate'>α-ケトグルタル酸</span><br>(<span class='jp-term jp-term-diagram' title='oxaloacetate'>オキサロ酢酸</span>を除いて反応を進める)"| ASP["<span class='jp-term jp-term-diagram' title='aspartate'>アスパラギン酸</span>"]
    NADH["NADH"] -->|"<span class='jp-term jp-term-diagram' title='complex I'>複合体I</span><br>NADH → NAD⁺<br><span class='jp-term jp-term-diagram' title='ubiquinone (coenzyme Q)'>ユビキノン</span> → ユビキノール<br><span class='jp-term jp-term-diagram' title='rotenone'>ロテノン</span>で阻害"| QH2["ユビキノール"]
  end
  subgraph SUCSUB["<span class='jp-term jp-term-diagram' title='succinic acid'>コハク酸</span>(FADH₂連結基質)"]
    SUC["<span class='jp-term jp-term-diagram' title='succinic acid'>コハク酸</span>"] -->|"<span class='jp-term jp-term-diagram' title='complex I'>複合体I</span>I(<span class='jp-term jp-term-diagram' title='succinate dehydrogenase (SDH)'>コハク酸デヒドロゲナーゼ</span>)<br><span class='jp-term jp-term-diagram' title='flavin adenine dinucleotide'>FAD</span> → FADH₂<br><span class='jp-term jp-term-diagram' title='malonate'>マロン酸</span>が<span class='jp-term jp-term-diagram' title='competitive inhibition'>競合阻害</span>"| FUM["<span class='jp-term jp-term-diagram' title='fumarate'>フマル酸</span>"]
    SUC -->|"<span class='jp-term jp-term-diagram' title='complex I'>複合体I</span>I<br>電子を FADH₂ 経由で<span class='jp-term jp-term-diagram' title='ubiquinone (coenzyme Q)'>ユビキノン</span>へ<br><span class='jp-term jp-term-diagram' title='ubiquinone (coenzyme Q)'>ユビキノン</span> → ユビキノール"| QH2
  end
  QH2 -->|"<span class='jp-term jp-term-diagram' title='complex III'>複合体III</span><br>ユビキノール → <span class='jp-term jp-term-diagram' title='ubiquinone (coenzyme Q)'>ユビキノン</span><br><span class='jp-term jp-term-diagram' title='antimycin A'>アンチマイシンA</span>で阻害"| CYTC["<span class='jp-term jp-term-diagram' title='reduced form'>還元型</span><span class='jp-term jp-term-diagram' title='cytochrome'>シトクロム</span>c"]
  CYTC -->|"<span class='jp-term jp-term-diagram' title='complex IV'>複合体IV</span><br>O₂ + 4H⁺ + 4e⁻ → 2H₂O<br>シアン化カリウムで阻害"| H2O["H₂O(ここで酸素が消費され、電極が検出する)"]

阻害薬・脱共役剤の効果

各薬剤の効果を酸素電極で観察し、共役の仕組みを実証する。

薬剤 作用 呼吸への効果
(2,4-) プロトンを漏らす ・P/O比が低下し、ADPなしでも呼吸は速いがATP合成なし
阻害 呼吸も抑制(勾配が限界に達する)。の添加で呼吸再開
ADP/ATP輸送体阻害 呼吸抑制(ADPがマトリックスへ入れず、は高いまま)。で再開
(シアン化カリウム、など) 特定部位を遮断 その遮断部位に依存する電子流と酸素消費を止める。迂回できる基質経路の有無で反応は異なる

⚠️ 薬剤への反応はと使用基質を組み合わせて解釈する。 シアン化カリウムのような末端()の遮断ではを加えても呼吸は戻らない。一方、はIをするため、へ電子を入れる基質系では迂回できる。単に「再開するか」だけでなく、どの電子流入経路を使っているかを確認する。

クラーク型酸素電極

溶存酸素を電気化学的に測る装置。

  • 構成: 参照電極(銀/)と白金電極(負極)を飽和KCl中に置き、ポリエチレン膜で反応液と隔てる。
  • 原理: 一定の分極電圧(0.6 V)をかけると、膜を通った酸素が白金電極で電解還元され、電流が酸素濃度に比例する(電流の領域を利用)。
  • 反応槽は恒温・撹拌し、を入れない。添加で酸素ゼロ点をする。

実験の流れ

  1. に基質(グルタミン酸+、または)を加える。
  2. 肝から単離したミトコンドリアを添加、呼吸速度(傾き)を記録。
  3. 既知量のADPを添加し、加速した酸素消費を記録 → 消費O₂とADP量からADP/O比を算出する。ATP合成量を直接測る場合はATP/O(実効P/O)として表す。目安は、グルタミン酸+(NADH連結基質)で約2.5、で約1.5(理論値との関係はP/O比)。傷んだミトコンドリアではH⁺が漏れて低く出る。
  4. ・2,4-・シアン化カリウム・・を順に加え、効果を観察。

まとめ

  • :酸化・リン酸化・イオン輸送はを共通中間体として共役。
  • 単離ミトコンドリアの酸素消費をで追う。ADPが呼吸を加速()。
  • =v(+ADP)/v(−ADP)は共役の強さ、P/O比は酸素消費あたりのATP産生効率を表し、両者は同じ指標ではない。2
  • 2,4-()・()・(ADP/ATP輸送体)・シアン化カリウム/()で共役を実証。
  • ・で止まった呼吸はで戻るが、阻害で止まった呼吸はADP・を加えても戻らない。ただし(I)の阻害は、グルタミン酸+のようにから電子を入れる基質なら迂回できる。

出典

  1. 1.Simultaneous measurement of mitochondrial respiration and ATP production in tissue homogenates and calculation of effective P/O ratios(Physiological Reports・2016)ATP産生と酸素消費を同時測定することで組織試料の実効P/O比を直接算出できる閲覧 2026-08-20
  2. 2.The RCR and ATP/O Indices Can Give Contradictory Messages about Mitochondrial Efficiency(Integrative and Comparative Biology・2018)RCRとATP/Oは異なる性質を測る指標であり、ミトコンドリア効率について相反する結論を与えうる閲覧 2026-08-20