Molecular Cell Biology

Molecular Cell Biology · 71

細胞生物学の手法:細胞培養、細胞分画、in vivo顕微鏡観察、フローサイトメトリー、FACS(EM学生のみ)

Methods in cell biology: cell culturing, cell fractionation, in vivo microscopy, flow cytometry, FACS (only for EM-students)

🧠 この単元は「細胞周期というを、4つの異なる窓から覗く」ための箱である——は観察の舞台を用意し(in vitroで他の細胞との相互作用を排除する)、は舞台の中身をオルガネラ単位に分解し、顕微鏡は生きたまま色をつけて見る窓、/SはDNA量という1つの指標だけで何千もの細胞を瞬時に分類・分離する窓である。共通するのは「見えないものを、何らかの(密度、蛍光、電荷)に変換して初めて見える/分けられるようにする」という発想である。

細胞制御ネットワークを理解する4つの手法

  1. 細胞周期を検証するには、細胞を培養状態で維持する必要がある
  2. 細胞周期のにおける位置を推定できる
  3. 細胞周期のから推定・検証できる
  4. 曝露した細胞の特定の構成要素を分離・単離する

1. 細胞培養

とは、分散した(散在する)細胞をin vitro(試験管内)条件下で維持することを指す。in vitro(「ガラスの中で」の意)とは、で起こる過程を実験室条件下で、外的影響を制御しながら操作することを意味する。

  • 培養では、細胞は増殖に必要な栄養素・・気体を供給する適切な培養培地からなる人工的環境で維持される
  • 培養は特定組織の分散した細胞から、あるいは組織形成を伴わない特定のから作られうる
  • の重要性: 細胞自身の性質を、他の細胞型との相互作用が起こらない状態で自由に調べることができる。培養中の細胞は独立した単位とみなされる→より大きな組織内での役割ではなく、個々の細胞に焦点を当てられる

の利点: 異なる細胞型を互いに独立して育てられる、実験条件(pH、温度など)の制御がよりin vitroの方が容易、観察が容易、操作可能かつ可能(遺伝子の挿入、分子の単離)、大量の細胞を長期間得て保存できる、多くの細胞機能を検証できる、細胞型を特定できる。

の欠点: 結果を留保なしに扱うことはできない、形質転換された細胞は正常細胞に似なくなっていく(変異、、組織構造の欠如)。

細胞培養の種類

生物の組織から直接調製される培養。細胞は他の細胞型・ECMからも分離され、培養中に1つの細胞型のみが存在するようにする。からのを数回経ると寿命が尽きる(約40〜50/分裂)。の細胞は培養皿から取り出し、いわゆる二次培養として繰り返し再培養できる→数週間〜数か月にわたり反復できる。

単一細胞から発展した培養であり、均一な遺伝的組成の細胞からなる(HeLa細胞子宮頸がん由来の)。適切な条件下で遺伝的に均一なまま無期限に持続培養できる。正常細胞のin vitro形質転換(ウイルス導入による導入)または腫瘍細胞(で正常細胞のトランスフェクトされたバージョンとみなせる)を用いて得られる。は維持が容易である:遺伝的に均一、凍結・保存が容易、企業や研究室から入手しやすい。

培養培地と培養の維持

培養培地: 細胞が適切に増殖し生命を維持できる栄養豊富な培地。主要成分:無機塩()、微量、炭水化物、アミノ酸、ビタミン、脂肪酸・脂質、タンパク質・ペプチド、血清、レッドなど。

培養維持の条件: では37度)、一定のCO2分圧、適切な湿度の確保、無菌条件(細胞のは無菌ボックス内で行う——細胞の微生物感染を避けることが重要であり、全ての段階を無菌条件下で行わなければならない)。

栄養豊富な環境におけるの増殖はであり、飽和に達するまで続く→増殖の余地がない、あるいは増殖を維持するのに十分な栄養がない状態を意味する。期では周囲の状況変化により増殖がする=実験を行うのに最も適した段階である。

長期間保存する場合は凍結すべきである。凍結は1分あたり1度の温度低下で均一に行うべきだが、解凍はできる限り速く行うべきである。

2. 細胞分画

とは、各構成要素の個々の機能を保持したままを分離するために用いられる過程である。

  • を分離し個別に研究できるようにする→細胞の「分画」を研究する
  • 支配的な細胞集団が同一の細胞型からなる臓器(肝臓や筋肉など)から採取した試料の方が扱いやすい

の手順は2つの主要な段階からなる:①:細胞の破壊と展開によりを利用可能にする ②沈降によりを分離し分画を作る。

均質化

の目的は、(1)臓器/組織由来の試料において、細胞をその(細胞-細胞関係)から解放すること、(2)表面の分子的つながりを破壊し、細胞を探索できるようにすること——を破壊することで達成できる。

の方法:

  1. 浸透圧ショック: を用いることで、膜結合空間が水を取り込む→空間の膨張を引き起こし最終的に膜を破裂させる
  2. や有機溶媒(胆汁酸)と組み合わせて使用できる。高分子(例:DNA)の分離にも適している
  3. 超音波: 細胞壁を破壊でき、の処理によく用いられる。圧力はによって生じる
  4. 高圧下で狭いバルブを通過させることにより細胞のを破壊する。細胞が特定の圧力で小さな隙間を通過し、細胞へのと圧力変化が細胞膜の破壊を引き起こす

Potter-Elvehjem型ホモジナイザー: ガラス管とそれに精密に合うテフロン製プランジャーからなる。組織の小片を含む試料/細胞を管内に入れ、プランジャーを回転させながら挿入する→物質が数回押される。その結果、臓器断片が崩壊し、細胞が分離し、が渦を巻く。

得られた分散液=は、細胞断片・・その他の細胞要素を含む分散系である。は濃すぎる(内部摩擦が大きい)ため、展開前に培地を加える。この培地は細胞内条件を模倣する:・緩衝成分・適切な浸透圧レベルを含む。

は(1)穏やか:脆弱なオルガネラを保持できるが均一な展開が得られない、(2)強力:均一な展開が得られるがより繊細なオルガネラに大きな損傷を与える、のいずれかでありうる。

遠心分離

沈降によりを分離し分画を作る過程。内の異なる部分を、そのサイズと密度に基づいて沈降により分離する。

  • は低温(0度近く)に保つべきである——分解酵素の活性を抑制するため。必要であれば剤を添加できる
  • 試料を含む管は金属ローターの円筒形の穴のリングに挿入される。ローターの急速な回転が巨大な力を生み、試料中の粒子が試料管の底部側面に沈降する
  • (S)単位は、あるの沈降速度を特徴づける単位として用いられる。特定のサイズ・形状の粒子の沈降速度は、粒子が管の底に沈む速さを測定する
  • S値が大きいほど粒子は大きく、機の底に速く到達する

あるの既知のS値に基づき、濾液内のどこにそのが存在するかを予測できる。連続的なのラウンドにより、そのを単離できる。

3. 生体内顕微鏡観察

は生細胞に対して行われ、非毒性で細胞生理と適合する特殊なマーカーを用いる。が内因性タンパク質を蛍光タンパク質で標識するために最もよく用いられる。これによりこれらのタンパク質の輸送、局在、相互作用をあらゆる種類の顕微鏡で追跡できる。

この技術により以下が可能になる:大部分の疾患の認識、治療法の精密な決定(検査+確認)、病理検査(診断、手術、治癒)、の生理・生物学的研究(+試験)。

観察対象を照らし、光学レンズ系を通過させて拡大し、人の目が像を直接捉えられるようにする。しかし限界がある:①暗いか高反射性の表面しか見えない/検証できない ②回折のためが非常に限定される ③焦点面の外にある点が像の鮮明さを低下させる。

生細胞では、細胞の内部構造が無色透明であるため良好な可視性を得るのに十分ながない。したがって様々な色素などの剤がしばしば固定標本や死んだ標本に適用される。

を吸収した物質による光の蛍光発光を利用する。ルミネセンスの一形態であり、放出される光は吸収された放射より波長が長くエネルギーが低い。

  • の利用は、大部分の・細胞構成要素・ビタミン・アミノ酸などがUVや可視光で照らされると、その化学構造に特徴的な可視光を放出するという事実に基づく
  • 大部分の場合、検証すべき構成要素はで標識される——それら自体がある程度光を放出する場合でも
  • の像は染色された部分のみを示す——これにより異なる構造を異なる色で染めることができ、高い特異性の像を得られる→並行して検証できる 例:、微小管、DNAを異なる色で染色→細胞周期中の変化を観察できる

4. フローサイトメトリー

は高速な多検証のための実験室手法である。混合細胞集団を用いて、各細胞型をその表現型やによって個別に測定・解析・分離できる。

  • アパーチャーとの直接接触は細胞を損傷させ、正確な測定には細胞の正確な位置決めが重要であるため、通常と呼ばれる別の流体系が用いられ、これが試料流体を取り囲んで同心円柱を形成する
  • 両方の流体系とヘッド内の開口部は圧力調節されており、流れはとなる→これをと呼ぶ
  • 細胞はした光源(レーザーまたはランプ)により照らされる。各細胞から光信号が生成される——一部はにより、またが標識されている場合は蛍光信号による。これらの光信号は適切な検出器で測定できる→蛍光マーカーを用いてを適用する場合、として知られる

最もよく測定される細胞の1つは細胞のDNA含量である→核酸特異的蛍光マーカー(例:ヨウ化プロピジウム=PI)で追跡できる。これらの色素は透過性のある細胞の膜を容易に通過しでDNAに結合する。結合の結果、蛍光団の蛍光量子活性が大幅に増加する。染色された色素の蛍光強度はDNA含量に比例する。

大部分の核酸はRNAも示す。したがって精密測定の場合、測定はRNA消化と組み合わされるか、選択的なDNA-RNA標識を達成できるアクリジンオレンジが用いられる。この色素は二本鎖核酸に結合すると緑色蛍光を発し、一本鎖核酸に結合すると赤色蛍光を発する。

最もよく用いられる用途: プログラム細胞死(アポトーシス)のモニタリング——DNA含量を変化させるため。DNA分布は細胞周期の異なる相にある細胞の分画を特徴づけるために用いられうる。

FACS(蛍光標識細胞分取)

  • の特殊な型である
  • 生物学的細胞の不均一な混合物を、細胞の特異的な・蛍光特性に基づき2つ以上の容器へ、1細胞ずつ分取する方法を提供する
  • 個々の細胞からの蛍光信号の高速・・定量的な記録、および関心のある細胞の物理的分離を提供する有用な科学機器である
  • 細胞は狭く急速に流れる液流の中心に保たれる
  • 流れは細胞間に大きな間隔ができるよう調整され、振動機構が細胞の流れを個々の液滴へ分解させる
  • 流れが液滴に分解する直前に、蛍光測定を通過し、そこで対象細胞の蛍光特性が測定される
  • 電気帯電リングが流れが液滴に分解する地点に置かれる
  • 帯電した液滴はその後静電偏向系を通過して落下し、その電荷に基づいて容器へ振り分けられる
flowchart TD
  A["細胞<span class='jp-term jp-term-diagram' title='suspension'>懸濁液</span>が<span class='jp-term jp-term-diagram' title='sheath fluid'>シース液</span>により流体力学的に<span class='jp-term jp-term-diagram' title='focusing'>集束</span>"] --> B["レーザー/ランプによる各細胞の照射"]
  B --> C["<span class='jp-term jp-term-diagram' title='light scattering'>光散乱</span>・蛍光信号の測定"]
  C --> D["流れが振動により個々の液滴へ分解"]
  D --> E["液滴が電気的に帯電"]
  E --> F["静電偏向系により電荷に応じ容器へ分取"]

まとめ

  • (有限寿命)と(無限増殖可能、遺伝的に均一)に分けられ、他の細胞との相互作用を排除した状態で個々の細胞の性質を調べることを可能にする。
  • (浸透圧ショック、、超音波、など)によりを作り、単位に基づく沈降速度の違いを利用)によりオルガネラを分離・単離する。
  • による生細胞の可視化)と/S(DNA含量などの蛍光信号に基づく高速な多測定・細胞分取)は、細胞周期の位置づけや細胞死の検出など、細胞を異なる角度から観察する相補的な手法である。