Molecular Cell Biology

Molecular Cell Biology · 72

ビウレット反応とエルマン法によるタンパク質の定量

Quantification of proteins by biuret reaction and Ellmann-method

🧠 この単元は「タンパク質の何を数えるか」という視点の違いで3つの手法を整理すると見通しがよい。 SSAは「タンパク質そのものの量(半定量的な)」、反応は「ペプチド結合の数」を発色に変換し、は「システイン側鎖のだけ」を狙い撃ちして測る——同じ「タンパク質を測る」という目的でも、測定対象のレベル(分子全体/結合/特定の)が異なる3つの窓であることを意識すると、それぞれの試薬の役割(SSA、Cu²⁺、DTNB)が自然につながる。

変性と沈殿の違い

変性= ポリペプチドの天然(3D形状)の喪失 タンパク質のの喪失

→ 変性はを表面に露出させ、凝集を引き起こしにつながる。は変性を伴わずに生じることもあり、その逆もありうる。

1. 沈殿

試料の総タンパク質含量の決定は非常に重要である——タンパク質の効率を定量するのに役立つためである。例えば、尿タンパク()は腎疾患を持つ人で検出されうる。糖尿病では、は腎症(腎疾患)の徴候でありうる。

→ 強い有機酸であるは、低濃度のタンパク質を不可逆的にさせることができる試薬である。

SSAはその負電荷によりタンパク質の正電荷を帯びた部分に結合し、その芳香環により表面に層を形成する結果、水へのが低下しタンパク質がする。少量ではタンパク質は試料を「」にし、より高いレベルのタンパク質では顆粒を形成し管の底に沈むこともある。の程度は微量から4+反応まで等級づけられ、タンパク質濃度の決定は半定量的である。

SSA試験結果 説明 タンパク質濃度
陰性 目立った/濁りなし。管の上から下まで透明 ≦0.05 mg/mL
微量 明るい光の下でかろうじてが見える 0.06-0.2 mg/mL
1+ はかなりあるが個々の顆粒は見えない 約0.3 mg/mL
2+ 顆粒化が見えるが大きな凝集塊(凝集)は見えない 約1 mg/mL
3+ 顆粒化と凝集塊の両方を伴うかなりの 2-5 mg/mL
4+ 凝集塊または固形粒子が存在。全てのタンパク質が管底に沈むと溶液は透明に見えることがある >5 mg/mL

2. ビウレット反応

反応はタンパク質濃度の決定に用いられる。反応は生体試料中のペプチド結合に特異的である。少なくとも2つのペプチド結合(カルボアミド結合)を含む全ての化合物が陽性の反応を示す。反応は化合物にちなんで名付けられている——これは陽性反応を示す最も単純な分子だが、試薬の成分ではない。

は加熱による2分子の尿素のにより形成される。

反応の原理は、アルカリ条件下で、深青色のCu²⁺イオンがタンパク質と紫色の複合体を形成することである:

  • ペプチド結合はオキソ-を起こす
  • 窒素に結合した水素が酸素(-OH)へ転移する
  • プロトンが解離し、酸素が負に帯電する
  • 1つのCu²⁺が2つの負電荷を帯びた酸素と窒素の孤立電子対と複合体を形成する→この複合体は紫色である(により546nmで測定できる)
  • 色の強度はペプチド結合の数に比例するため、総タンパク質濃度の測定に利用できる

→ この方法は0.5〜5 mg/mLのタンパク質濃度範囲で十分な感度を持つ。

実験: 各試験管に試薬(CuSO4+NaOH)を加える。既知のと収集したデータに基づきをプロットする。その後、2つの未知タンパク質溶液の濃度を測定する→溶液濃度と値の間にほぼ線形の関係がある→ランベルト・ベールの法則により濃度を計算できる(A = εcl、A:、ε:[M⁻¹cm⁻¹]、c:モル濃度[M]、l:[cm])。

flowchart TD
  A["アルカリ条件下でCu2+イオンがペプチド結合と接触"] --> B["ペプチド結合のオキソ-<span class='jp-term jp-term-diagram' title='oxo-enol tautomerism'>エノール互変異性</span>"]
  B --> C["窒素結合水素が酸素へ転移・プロトン解離"]
  C --> D["Cu2+が2つの負電荷酸素+窒素孤立電子対と複合体形成"]
  D --> E["紫色複合体形成(546nmで測定)"]
  E --> F["色の強度=ペプチド結合数に比例→総タンパク質濃度を算出"]

3. エルマン法

エルマン反応は(-SH)基の存在/濃度を決定するために用いられる。はシステインに見出されるため、システインを含むタンパク質は陽性反応を示す。

はジスルフィドである5,5’-ジチオビス-2-である。反応の間、が無色のDTNBと反応する→TNB)を形成し、これが黄色を呈する酸である5-チオ-2-を遊離させる。

黄色TNBの量はにより412nmで決定できる。TNBのは濃度と線形に変化するため、の濃度は(モル)を用いて計算できる:

c = E·Vr / (ε·Vs)

(c:試料の濃度[M]、E:試料の[O.D.]、ε:412nmにおけるTNBの[ε=13600 1/M]、Vr:反応容積[mL]、Vs:試料容積[mL])

flowchart TD
  A["タンパク質中のシステインの<span class='jp-term jp-term-diagram' title='thiol'>チオール</span>(-SH)基"] --> B["無色のDTNB(<span class='jp-term jp-term-diagram' title='Ellman&#39;s reagent'>エルマン試薬</span>)と反応"]
  B --> C["<span class='jp-term jp-term-diagram' title='mixed disulfide'>混合ジスルフィド</span>(TNB<span class='jp-term jp-term-diagram' title='adduct'>付加体</span>)形成"]
  C --> D["黄色のTNBが遊離"]
  D --> E["412nmでの<span class='jp-term jp-term-diagram' title='absorbance'>吸光度</span>測定"]
  E --> F["<span class='jp-term jp-term-diagram' title='molar absorption coefficient'>モル吸光係数</span>を用いて<span class='jp-term jp-term-diagram' title='thiol'>チオール</span>濃度を算出"]

💡 3つの手法はいずれも「見えないタンパク質の量を、目に見える色の変化に変換する」という共通の発想に立つが、何を測っているかが異なる——SSAはタンパク質分子そのものの反応はペプチド結合の数(=タンパク質の骨格)、はシステイン側鎖の(=特定の)である。目的に応じてどのレベルの情報を得たいかで手法を選ぶ。

まとめ

  • SSA()はタンパク質を不可逆的にさせ、の程度(陰性〜4+)による半定量的なタンパク質濃度推定に用いられる。
  • 反応はペプチド結合に特異的であり、アルカリ条件下でCu²⁺イオンとペプチド結合が紫色の複合体を形成する現象を利用して総タンパク質濃度を定量する(546nm、感度範囲0.5〜5 mg/mL)。
  • はDTNB試薬がシステインのと反応し黄色のTNBを遊離させる反応を利用し、412nmでの測定により(システイン含有タンパク質)濃度を定量する。