Molecular Cell Biology

Molecular Cell Biology · 75

アフィニティークロマトグラフィーによる細菌発現タンパク質の精製

Purification of a bacterially expressed protein by affinity chromatography

🧠 の核心は「残基がイオンとを作る」という1つの化学的事実であり、この単元全体はその1点をどう使い倒すかというストーリーである。 6×Hisタグを持つ標的タンパク質だけが樹脂に強く結合し、他の宿主タンパク質は洗い流される——そして溶出は「もっと強い結合」ではなく「という競合分子を大量に投入して数で押し切る」という発想で行われる。20mMでは6×Hisタグの親和性に負けて洗浄液に留まり、500mMではで6×His-YFPを追い出す、という同じ試薬()の濃度だけを変えた2段階操作である点がこの法の巧妙さである。

組換えタンパク質産生の背景

人工的なDNA配列(組換えDNA)が適切なタンパク質ベクターへ挿入される。ベクターは原核/真核宿主細胞へ導入され、組換えタンパク質の発現を誘導できる。

使用前に、標的タンパク質は宿主細胞の無用だが豊富な内因性タンパク質から分離されなければならない。タンパク質のような特殊なアッセイにより行われる——これは1段階で高を達成するために用いられるツールである。したがって組換えタンパク質は、の適用を可能にする短いでタグ付けされることが多い。

実験

この実験の目的は、大腸菌細胞内で発現したすることである。YFPはそのN末端に6つの連続した残基(6×His)でタグ付けされており、に基づくを可能にする。

誘導の成功はUV光による細胞の照射によって検出できる。誘導後、は低速段階により培養ブロスから分離できる。により管の底に細菌ペレットが、上部に液体が得られる。両相をUV光下で調べることで、誘導された細菌ペレットが最も強い蛍光を発することが観察できる。

6×His-YFPを複雑なマトリックスから分離するため、最初の作業は細胞を開くこと:(1)細胞壁と膜を破壊する、続いて(2)による標的タンパク質の単離。

1. 細胞溶解

溶解液の:リン酸緩衝液、塩化ナトリウム、、DNase。

  • リン酸緩衝液は溶解に最適なpH(pH=8)を保証し、NaClは適切なイオン強度を提供し、とDNase酵素がを促進する
  • 細胞壁と膜の破壊は染色体DNAの放出を引き起こす→の粘度を大幅に増加させる→溶解液に加えられたDNaseが全ての型のDNA+RNAを分解し、溶液の粘度を低下させる
  • 再懸濁後、物は最大rpmでされ、より大きな細菌(例:細胞膜、細胞壁断片)や不溶性粒子を管の底へ沈降させる一方、可溶性タンパク質(6×His-YFP)はに残る
  • この段階で、誘導された試料のはUV下でより高い蛍光を示す。誘導された試料の(溶解物)がに用いられる

2. アフィニティークロマトグラフィー

はタンパク質の分離に用いられる。系は固定相(例:紙、ガラス、樹脂、ビーズ)と、固定相を通過する移動相(溶媒と分離される分子)を含む。固定相は通常カラムに詰められる。

の場合、標的分子への高い親和性を持つリガンドと結合した固定相(ビーズ、樹脂)を用いる。リガンドは通常固相(例:ビーズ)に固定化される。

の基盤は、を形成できることである。樹脂()に特異的に結合したタンパク質は、低pHグリシン緩衝液または競合物質(/)により溶出できる。に用いるマイクロカラムは、に用いるビーズを含むポリエチレンを含む。

flowchart TD
  A["結合:6xHis-YFPを含む溶解物を<span class='jp-term jp-term-diagram' title='nickel'>ニッケル</span>樹脂に通す"] --> B["6xHisが<span class='jp-term jp-term-diagram' title='nickel'>ニッケル</span>に<span class='jp-term jp-term-diagram' title='coordinate bond'>配位結合</span>"]
  B --> C["洗浄:低濃度<span class='jp-term jp-term-diagram' title='imidazole'>イミダゾール</span>(20mM)で他のタンパク質を除去"]
  C --> D["<span class='jp-term jp-term-diagram' title='Elute'>溶出</span>:高濃度<span class='jp-term jp-term-diagram' title='imidazole'>イミダゾール</span>(500mM)で6xHis-YFPを<span class='jp-term jp-term-diagram' title='competitive'>競合的</span>に追い出す"]
  D --> E["<span class='jp-term jp-term-diagram' title='purification'>精製</span>された6xHis-YFPの回収"]

精製に用いる3種の溶液

  1. 平衡化/溶解溶液(結合、Bind): 溶解に用いたとDNase酵素を除く溶解溶液の全成分を含み、Hisタグ付きタンパク質を類似の溶液内で結合させるためカラムを準備する
  2. 洗浄溶液: 平衡化緩衝液と同じ成分を持つが、ビーズから特異的に結合していないタンパク質を除去するため低濃度の(20mM)を含む。は6×Hisの競合物質として働くが、イオンへの親和性は6×Hisタグ付きタンパク質のそれより低いままである。6つのイオンへの高い親和性のため、6×His-YFPは20mM濃度でもビーズに安定に結合し続ける
  3. 溶出溶液: 平衡化緩衝液と同じ成分を持つが、高濃度の(500mM)を含む。ヘキサタグのイオンへの親和性はのそれよりはるかに高いが、高濃度により、ビーズに結合した6×His-YFPをに追い出すことができる。数分間のインキュベーション後、溶出された6×His-YFPはUV光下で管底の蛍光リングとして観察できる。

💡 洗浄段階と溶出段階は同じ試薬()の濃度だけを変えた操作である。 20mMでは6×Hisタグの圧倒的な親和性に負けてだけが洗い流され、500mMでは(質量作用)によって6×His-YFPさえもに追い出される——「親和性の強さ」ではなく「濃度による数の力」で溶出を達成する点がの実践的なコツである。

まとめ

  • 組換えタンパク質産生では、目的タンパク質を短いアミノ酸タグ(例:6×His)でマークし、により1段階で高する。
  • ・DNase・リン酸緩衝液)によりを破壊しに可溶性タンパク質を得た後、残基とイオンのを利用したで標的タンパク質を樹脂に結合させる。
  • 洗浄(低濃度、20mM)ではタンパク質のみが除去され、溶出(高濃度、500mM)ではにより6×Hisタグ付き標的タンパク質自体がに追い出されて回収される。