分子細胞生物学

分子細胞生物学 · 29

リアルタイムPCRおよびDNAマイクロアレイ法による遺伝子発現の解析

Investigation of gene expression by real-time PCR and DNA-microarray methodology

🧠 は「1遺伝子を高精度に定量する」ための技術、は「数千遺伝子を同時に、荒いで比較する」ための技術——両者はとスループットのの両極に位置する。の鍵は蛍光シグナルを増幅過程中に読み取ること、の鍵は実験サンプルと参照サンプルを異なる色(赤・緑)で標識しにハイブリダイズさせることで、相対発現量を「色」として可視化する点にある。

遺伝子発現研究の目的

遺伝子発現を研究する目的は、遺伝子とそれがコードするタンパク質がでどのように機能するかを決定することである。それを知る最良の方法の1つは、ある遺伝子を取り除き、生物がそれを欠いたときに何が起こるかを見ることである。この過程が成立するには、どの遺伝子がどれだけあるか——そして正しい遺伝子であるかを知る必要がある。

リアルタイムPCR

  • ポリメラーゼが単離できた調査対象のコピーを作るの一種
  • 最終産物の電気泳動の代わりに、各後にこれを定量する——結果はの最中に得られ、後ではない
  • は配列特異的プライマー(プローブ)を標識するを用いる
  • を備えた特殊なサーマルサイクラーが各サイクル中の蛍光をモニタリングする
  • 測定された蛍光は増幅された産物()の総量に比例し、な蛍光強度の変化から各サイクルで産生された量を算出できる

通常のと比較して可能なこと:

  • より効率的——各後に調査対象を検出できるため
  • 産物の定量的決定——通常のではマーカーを用いて遺伝子の有無しか判定できないが、では(グラム単位で)どれだけあるかを決定できる

リアルタイムPCRグラフ

  • が定義される——より高強度の蛍光のみが解析対象となる
  • では、産物量は各サイクルでおよそ倍加する
  • 反応が進むにつれ反応成分(酵素/基質)が消費され、最終的に反応を制限する——この時点で反応はし非に入り、その後が続く

検出技術

は特異的または非特異的でありうる。

非特異的検出: 任意の産物

  • 結合色素(SYBR greenなど)は、混合物中の全てのに結合する色素——結合すると色素が蛍光を発する
  • 中の産物増加は蛍光強度の増加につながり、各サイクルで検出器により測定できる
  • ただしこの方法はやや不正確である——全てのdsDNAに結合するため、(二量化した一本鎖プライマー→二本鎖プライマー)にも結合してしまい、標的配列の正確なモニタリングを妨げる

特異的検出: レポータープローブ法

  • 産物の特異的検出は蛍光レポータープローブを用いて行われる
  • これらのプローブは一端に蛍光レポーター、他端にで標識された断片である
  • の近接がその蛍光の検出を妨げる。プローブは段階で自力で(ポリメラーゼの働きではなくにより)標的配列内にハイブリダイズし、そのことがの基質を作る
  • 続く伸長段階で、鋳型に沿って進んできた(Taq)ポリメラーゼの5′→3′がプローブを小断片へ分解する。これによりレポーターとが物理的に切り離される1
  • レポーターがから離れることで、照射時に蛍光が検出可能となる=蛍光を妨げる近接がなくなる
  • プローブがの一部にならないため、これは産物測定のより正確な方法である
  • 蛍光は装置で検出・測定される

⚠️ プローブが切断されるのは中ではなく伸長中である。 で起こるのは「プローブが標的にくっついての基質になる」ところまでで、実際の分解=シグナル発生はポリメラーゼが伸長してプローブに追いつく段階で起こる。またプローブは3′末端が伸長できないよう修飾されており、自身がプライマーとして働くことはない。

により鋳型を相対的・の両方で決定できる(17-function-and-application-of-pcr-and-real-time-pcr参照)。

定量解析の原理

  • 閾値強度: 効率的な相()において高く検出できる強度(産物量)
  • (Cт): 産物量が閾値に等しくなる時点として算出されるサイクル数

💡 CтよりCqが標準名称。 装置メーカーごとにCт・Cp(crossing point)・TOPなど呼び名がばらばらだったため、2009年のMIQEガイドライン以降はCq(quantification cycle、定量サイクル)に統一された。2025年に発表されたMIQE 2.0でもCqが正式名称として使われ、さらに「Cq値をそのまま報告するのではなく、増幅効率で補正した標的量へ変換し、予測区間・・とともに報告すること」が勧告されている2。試験でCтと書いてあっても指すものは同じ。

絶対定量: 断片のグラム数または正確な量を決定する(例:試料中のウイルス量)。これには、設定された閾値強度とその強度に達するために必要なサイクル数を用いた(希釈系列による)が必要。未知試料(例:ウイルス量)の解析はこのから得られる。

相対定量: ある化合物がに及ぼす効果を調べることで試料同士を比較する——例:腫瘍試料は健常試料より10倍多くの産物を持ちうる→mRNA量を測定する。mRNAは逆転写酵素により相補的(cDNA)として存在する。定量はコントロール参照に対するcDNAレベルの変化として表現される。

応用

SNP: 終了後に検出される——2つのアレルに特異的なプローブにより検出され、これらのプローブは異なる色素(色)で標識される。例えばC/T多型がある場合、Cを含むプローブとTを含むプローブは異なる色を持つ→SNPを決定できる。

新規多型の同定:「融解曲線解析」 ——産物を緩やかに加熱し、融解点(dsDNA→ssDNAとなる点、この時点で蛍光シグナルが減少する——dsDNAに結合したときのみ蛍光を発するため)を調べる。塩基配列が異なる分子の融解点はH結合量(それを切るために必要なエネルギー量)により異なる——融解点(シグナル減少点)を調べることで配列(多型)を調査できる。

DNAマイクロアレイ

(チップとも呼ばれる)は、多数の遺伝子の発現レベルを同時に測定する、またはゲノム領域の遺伝子型を決定するために用いられる。

は顕微鏡で、定義された位置(行と列)に数千の微小スポットが印刷されており、各スポットには既知の配列/遺伝子が含まれる。

解析を行うには、通常、実験サンプルと参照サンプルの両方からmRNA分子を採取する。例えば参照サンプルは健常個体から、実験サンプルは疾患を持つ人から採取できる。

flowchart TD
  A["実験サンプル・参照サンプルからmRNAを採取"] --> B["逆転写酵素でcDNAへ変換"]
  B --> C["実験cDNAを赤色<span class='jp-term jp-term-diagram' title='fluorescent dye'>蛍光色素</span>、参照cDNAを緑色<span class='jp-term jp-term-diagram' title='fluorescent dye'>蛍光色素</span>で標識"]
  C --> D["両サンプルを混合し<span class='jp-term jp-term-diagram' title='microarray'>マイクロアレイ</span><span class='jp-term jp-term-diagram' title='slide'>スライド</span>へ結合"]
  D --> E["スポット上のssDNAプローブがcDNAとハイブリダイズ(H結合形成)"]
  E --> F["<span class='jp-term jp-term-diagram' title='complementation'>相補性</span>が高いほど強固に結合→<span class='jp-term jp-term-diagram' title='aspecific binding'>非特異的結合</span>は洗浄除去"]
  F --> G["実験サンプルで発現高→赤/参照サンプルで発現高→緑/同等→黄"]
  G --> H["<span class='jp-term jp-term-diagram' title='gene expression profile'>遺伝子発現プロファイル</span>の作成"]
  1. 両方のmRNAサンプルは逆転写酵素により相補的(cDNA)へ変換される——cDNAは基本的にmRNAのコピーだが化学的にはである
  2. 実験cDNAは赤色で標識され、参照cDNAは緑色色素で標識される→2つのサンプルは混合されへ結合させられる
  3. のスポット中の特異的配列(プローブ)はssDNAであり、cDNA鎖を見つけて互いに結合する=(相補的ヌクレオチド間のH結合形成)
  4. 2本の鎖のが高いほど、より強固に結合する→配列を洗い流すことができる
  5. ある特定の遺伝子の発現が参照サンプルより実験サンプルで高い場合→上の対応スポットは赤色に見える。逆に実験サンプルでの発現が参照サンプルより低い場合→スポットは緑色に見える。両サンプルで発現が等しい場合→スポットは黄色に見える
  6. を通じて収集されたデータは、特定の条件/処置への応答として多数の遺伝子発現の同時変化を示すの作成に利用できる

はSNP検出、、的解析、、疾患への素因の測定など、多くの用途に利用できる。

💡 発現プロファイリングの主役はから-seqへ移った。 はに依存するため、あらかじめどの配列をスポットするか決めておかねばならず、載せていない転写産物は原理的に検出できない。次世代シーケンサによるRNA-seqにはこのがなく、転写産物とそのの量を他の方法よりはるかに精密に測定でき、真核生物トランスームの広がりと複雑さについての見方を塗り替えた3。基盤のと比べ、-seqは背景ノイズが少なく発現量のが広いうえ、・融合遺伝子・変異/SNP・アレル特異的発現も同じデータから読める4。

💡 ただしが消えたわけではない。 調べる配列があらかじめ決まっている用途——(SNPアレイ)や定型の発現検査——では今もアレイが使われ、既存のアレイデータと-seqデータを統合して解析する手法自体が研究対象になっている。上の赤・緑の2色競合は自作スポットアレイの古典的な方式であり、高密度のアレイ(例:Affymetrix Human Exon 1.0 ST)では1検体を単色で読む方式がとられるため、教科書の図と実際の装置が食い違って見えることがある。

まとめ

  • は蛍光シグナル(SYBR Green等の非特異的色素、またはTaqMan等の特異的プローブ)を増幅過程中にモニタリングすることで、を定性的(相対定量)・定量的(絶対定量)の両方で解析できる。
  • 絶対定量には希釈系列によるが必要であり、相対定量は参照遺伝子に対する変化として発現量を表現する。
  • SNPは色分けされたアレル特異的プローブにより、新規多型の同定は融解曲線解析(dsDNA→ssDNA転移点の検出)により行われる。
  • は数千のプローブスポットを用い、実験・参照サンプルのcDNAを異なる蛍光色で標識・競合ハイブリダイズさせることで、多数の遺伝子発現を同時に相対比較する(赤=実験サンプルで高発現、緑=参照サンプルで高発現、黄=同等)。
  • ただしは「スポットした配列しか見えない」法であり、網羅的な発現プロファイリングの主役は次世代シーケンサによる-seqへ移っている。アレイは配列が既知の用途(SNPアレイ・定型検査)に残っている。

出典

  1. 1.Detection of specific polymerase chain reaction product by utilizing the 5'----3' exonuclease activity of Thermus aquaticus DNA polymerase(Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America・1991)3′末端が伸長不能で5′末端を標識したオリゴヌクレオチドプローブが標的配列内にアニーリングするとエキソヌクレアーゼの基質となり、増幅中にTaq DNAポリメラーゼの5′→3′エキソヌクレアーゼ活性がプローブを小断片へ分解して特異的シグナルを生じる(TaqManの原理)閲覧 2026-08-22
  2. 2.MIQE 2.0: Revision of the Minimum Information for Publication of Quantitative Real-Time PCR Experiments Guidelines(Clinical Chemistry・2025)2009年のMIQEガイドラインの改訂版であるMIQE 2.0は、定量サイクル(quantification cycle、Cq)値を増幅効率で補正した標的量へ変換し、予測区間・検出限界・ダイナミックレンジとともに報告することを勧告している閲覧 2026-08-22
  3. 3.RNA-Seq: a revolutionary tool for transcriptomics(Nature Reviews Genetics・2009)深層シーケンシングによるRNA-Seqは真核生物トランスクリプトームの広がりと複雑さについての見方を変え、転写産物とそのアイソフォームの量を他の方法よりはるかに精密に測定できる閲覧 2026-08-22
  4. 4.RNA sequencing (RNA-Seq) and its application in ovarian cancer(Gynecologic Oncology・2019)ハイブリダイゼーション基盤のマイクロアレイやサンガー法と比べ、RNA-Seqは背景ノイズが少なく発現量のダイナミックレンジが広い。さらに発現定量にとどまらず選択的スプライシング・融合遺伝子・変異/SNP・アレル特異的発現の同定にも使える閲覧 2026-08-22