分子細胞生物学

分子細胞生物学 · 73

細胞内分画の解析

Investigation of subcellular cell fractions

🧠 この実験の核心は「各オルガネラだけに存在する分子(マーカー)」を見つけ、それを比色反応に変換して「そこにそのオルガネラがどれだけあるか」を測る、という発想である。 核は量、ミトコンドリアは、はUDP(ER)や5’-(細胞膜)、細胞質は——で分けた画分の「」を、その画分に特異的な酵素活性の有無で検証するのがこの実験全体の論理である。

分画研究の目的

は複数の(核、ミトコンドリア、ER、ゴルジ、リソソーム、、細胞質)を含み、それぞれがその特定の区画にのみ見出される高度に特異的な高分子を含む。したがってこれらの高分子はオルガネラ特異的マーカーとみなすことができる。この実験の目的は、これらのマーカーが実際に特定の分画(区画)に特異的であることを検証することである。

マーカーには例えば、や細胞質の、酵素、核酸がありうる。これらのマーカーは以下の手法を用いて同定できる:

  • 免疫染色(): 無傷の細胞や組織中のマーカーを検出できる。タンパク質は抗体により、はDAPI()により検出される
  • 免疫ブロット(): タンパク質を細胞内分画から単離し、SDS-PAGE(試料をその分子量ごとに分ける)で分離した後、へ転写する
  • 生化学的アッセイ: 細胞内分画由来の酵素を特異的基質存在下でインキュベートし、産物形成を/蛍光光度計でモニターする(→タンパク質の単離)

💡 今は「マーカーを1つずつ測る」代わりに「全を一度に地図にする」やり方がある。 複数の画分を作り、各画分でのタンパク質の分布パターンを定量で読む(分画プロファイリング)と機械学習を組み合わせると、マーカー酵素を1つずつ測らなくても数千のタンパク質の局在を一挙に決められる。HeLa細胞のDynamic Organellar Mapsでは8,700以上のタンパク質に局在と絶対が与えられ、主要オルガネラがすべて分離され、局在予測精度は92%超と見積もられている1。本実習の「画分×マーカー酵素」は、この空間を手作業で最小単位に縮めたものと位置づけられる。

マーカーの検出は、と呼ばれる分画法によって単離された細胞内分画で行われる。これは細胞内オルガネラの沈降速度の違いを利用する→粗細胞抽出液からのは増加するrpm(毎分回転数)でのにより分離される。沈降速度は各区画に特異的である:

分画 マーカー g値
核 ゲノム 1000
ミトコンドリア 11,000
5’-(細胞膜)、UDP(ER) 100,000
細胞質 >100,000()

⚠️ が分けているのは「密度」そのものではなく「沈降速度」である。 沈降速度には粒子の大きさ・形・密度がまとめて効き、大きさの寄与が支配的になる。密度そのもので分けたいなら、やOptiPrepの密度勾配(等密度)を重ねる必要がある。実際、は沈降特性が他の主要オルガネラ(特に)と近いため分画だけでは分離しきれず、高に取れているのは密度1.22〜1.24 g/cm³の「重い」だけである2。

⚠️ この4分画は理想化された図式で、実際の画分は純粋ではない。 古典的な肝の分画はこれよりもう1段細かく、核画分・重ミトコンドリア画分・軽ミトコンドリア画分(リソソームとが主に集まる)・・可溶性画分の5つに分ける3。そのうえでもマーカーは1つの画分に収まらない——肝でのマーカーであるカタラーゼは軽ミトコンドリア画分と可溶性画分の両方に濃縮され、アシル-CoAオキシダーゼは核画分に約30%が現れ、PMP70は可溶性画分を除く全画分から検出される3。つまり本実習が各画分でマーカー酵素活性を測るのは、「純粋に分かれたことを確認する」ためというよりどの画分にどれだけ混ざり込んでいるかを定量するためである。

核マーカー:ゲノムDNA

ゲノムが核マーカーである。の酸加水分解によりデオキシが得られ、これはにより定量される——これが呈色生成物(シッフ塩基=青色)を生じる。

flowchart TD
  A["ゲノム<span class='jp-term jp-term-diagram' title='deoxyribonucleic acid'>DNA</span>"] --> B["酸加水分解"]
  B --> C["デオキシ<span class='jp-term jp-term-diagram' title='ribose'>リボース</span>"]
  C --> D["<span class='jp-term jp-term-diagram' title='diphenylamine'>ジフェニルアミン</span>との反応"]
  D --> E["呈色<span class='jp-term jp-term-diagram' title='condensation'>縮合</span>生成物(シッフ塩基、青色)"]

ミトコンドリアマーカー:コハク酸脱水素酵素

は内ミトコンドリア膜の酵素である。この酵素はその基質であるから2つの水素原子を除去し、産物であるを生じる。これらの水素原子は酵素に強く結合したを還元できる。

酵素活性を測定するために、FADH2を再酸化できる試薬が加えられる。この反応の間、試薬の色が変化する。用いられる試薬はINT塩化物であり、そのは赤色(低)である。

INTをするために、「FTF混合液」でされる:

  • (pHを低下させる)
  • Triton X()
  • (と反応する)

→ FTF混合液を加えることで、赤色溶液を見ることができる(INTがされるため)。

flowchart TD
  A["<span class='jp-term jp-term-diagram' title='succinic acid'>コハク酸</span>"] -->|"<span class='jp-term jp-term-diagram' title='succinate dehydrogenase'>コハク酸脱水素酵素</span>"| B["<span class='jp-term jp-term-diagram' title='fumarate'>フマル酸</span>+2H"]
  B --> C["<span class='jp-term jp-term-diagram' title='flavin adenine dinucleotide'>FAD</span>が還元されFADH2に"]
  C --> D["INT塩化物によるFADH2の再酸化"]
  D --> E["INT<span class='jp-term jp-term-diagram' title='formazan'>ホルマザン</span>(赤色、低<span class='jp-term jp-term-diagram' title='solubility'>溶解性</span>)形成"]
  E --> F["FTF混合液(<span class='jp-term jp-term-diagram' title='formic acid'>ギ酸</span>+Triton X+<span class='jp-term jp-term-diagram' title='formaldehyde'>ホルムアルデヒド</span>)による<span class='jp-term jp-term-diagram' title='solubilization'>可溶化</span>"]
  F --> G["赤色溶液として測定可能"]

ミクロソーム画分

は、ERやゴルジ膜のような大きな細胞内膜系の細胞抽出である小胞を大部分含む。や細胞膜断片も含みうる。

ERマーカー:UDPグルクロニルトランスフェラーゼ

マーカーはUDPである。人工的な黄色の基質(p-ニトロ)が、UDP-の部分をへ転移する反応を触媒するウリジン二リン酸-とともに用いられる→体外への排出が容易なよりの化合物を産生する。

→ この実習系での反応産物は無色のp-であり、黄色いp-ニトロが消費されてが下がるぶんを酵素活性として読む。で同じ酵素が担う代表的な反応がビリルビンのモノ/ジ生成で、こちらも水溶性で無毒になり胆汁へ排泄される。p-ニトロはその生理反応をで模したモデル基質であって、実習の反応産物がビリルビンになるわけではない。

⚠️ 無傷の小胞では活性が「隠れて」いる。 UDPはER膜に埋まっており、触媒ドメインがER内腔側を向いている。そのため小胞が無傷のままでは基質もUDP-も酵素に届かず、活性はにとどまる。Triton X-100などので膜のを壊して初めて全活性が現れる4。でこの酵素を測るときにを加えるのはこのためで、加え忘れると「ERマーカーが検出されない」という偽陰性になる。

細胞膜マーカー:5’-ヌクレオチダーゼ

マーカーは5’である。Fiske-Subbarow比色リン酸アッセイにより5’レベルを決定する。5’は、Mg²⁺イオン存在下でグリシン-NaOH緩衝液(pH8.5)中のAMPを用いて細胞内分画からアッセイされる。

細胞質マーカー:アルギナーゼ

マーカーはである。の肝臓において、は細胞質に局在し、の最終酵素反応を触媒する。

flowchart TD
  A["<span class='jp-term jp-term-diagram' title='arginine (Arg)'>アルギニン</span>+H2O"] -->|"<span class='jp-term jp-term-diagram' title='arginase'>アルギナーゼ</span>"| B["<span class='jp-term jp-term-diagram' title='ornithine'>オルニチン</span>+尿素"]
  B --> C["<span class='jp-term jp-term-diagram' title='diacetyl'>ジアセチル</span>モノ<span class='jp-term jp-term-diagram' title='oxime'>オキシム</span>+チオセミカルバジドとの反応"]
  C --> D["呈色生成物"]

まとめ

  • 各は特異的なマーカー分子(核:ゲノム、ミトコンドリア:、ER:UDP、細胞膜:5’-、細胞質:)を持ち、これらは免疫染色・・生化学的アッセイにより同定される。
  • は細胞内オルガネラの沈降速度の違い(大きさが支配的で密度も効く)を利用し、増加するg値(1000→11,000→100,000→>100,000)で粗細胞抽出液をすることで各分画を分離する。密度そのもので分けるには密度勾配(等密度)を重ねる必要があり、分画だけで得た画分は純粋ではない——マーカーは複数の画分にまたがって現れる。
  • のUDPはがER内腔を向いているため、で小胞膜を壊さないと活性が現れない(潜在活性)。実習の反応産物はp-で、ビリルビンは同じ酵素がで担う代表反応の側である。
  • 各マーカー酵素はそれぞれ特異的な比色反応(→デオキシ→発色、→→INT発色など)に基づいて定量され、分画のを検証するために用いられる。

出典

  1. 1.Global, quantitative and dynamic mapping of protein subcellular localization(eLife・2016)分画プロファイリングと定量質量分析を組み合わせたDynamic Organellar MapsはHeLa細胞の8,700以上のタンパク質に局在と絶対コピー数を与え、主要オルガネラをすべて分離し、局在予測精度は92%超と見積もられた閲覧 2026-08-22
  2. 2.Peroxisome subpopulations of the rat liver. Isolation by immune free flow electrophoresis(The Journal of Histochemistry and Cytochemistry・1999)ペルオキシソームは通常は分画遠心と密度勾配遠心で単離されるが、沈降特性が他の主要オルガネラ(特にミクロソーム)と近いため分離が難しく、これまで高純度に精製できたのは浮遊密度1.22〜1.24 g/cm³の「重い」ペルオキシソームだけである閲覧 2026-08-22
  3. 3.Differential induction of peroxisomal populations in subcellular fractions of rat liver(Biochimica et Biophysica Acta・2001)ラット肝の古典的な分画遠心は核画分・重ミトコンドリア画分・軽ミトコンドリア画分・ミクロソーム画分・可溶性画分の5分画に分ける。オルガネラマーカーは単一画分に収まらず、カタラーゼは主に軽ミトコンドリア画分と可溶性画分に濃縮され、アシル-CoAオキシダーゼは核画分に約30%が分布し、PMP70は可溶性画分を除く全画分に検出される閲覧 2026-08-22
  4. 4.Intracellular localization of UDP-glucuronosyltransferase expressed from the transfected cDNA in cultured cells(Cell Structure and Function・1993)肝のUDPグルクロニルトランスフェラーゼは小胞体膜に局在し触媒ドメインが内腔側を向く。その酵素活性は潜在状態にあり、界面活性剤Triton X-100で膜の連続性を壊して初めてin vitroアッセイで全活性が現れる閲覧 2026-08-22